1.Wprowadzenie
2.Przygotowanie do izolacji i analizy RNA (omówienie zasady izolacji, przygotowanie buforów).
3.Izolacja RNA metodą Chomczyńskiego z tkanek i hodowli komórkowych.
4.Elektroforeza RNA w żelu denaturującym. Wizualizacja żelu w bromku etydyny za pomocą promieniowania ultrafioletowego.
5.Reakcja odwrotnej transkrypcji na matrycy wyizolowanego RNA

1.Podstawy reakcji łańcuchowej polimerazy (PCR): projektowanie starterów, ustalanie warunków reakcji, rodzaje stosowanych polimeraz DNA. Bazy danych sekwencji genów, oprogramowanie do analizy sekwencji. Różne zastosowania reakcji PCR.
2.Reakcja PCR na na matrycy cDNA uzyskanego poprzedniego dnia w reakcji odwrotnej transkrypcji, z wykorzystaniem starterów komplementarnych do sekwencji hostgenu HPRT.
3.Elektroforeza produktów PCR w żelu agarozowym. Wizualizacja wyników za pomocą bromku etydyny i promieniowania ultrafioletowego.
4.Klonowanie molekularne: Oczyszczanie produktu PCR. Synteza końcówek adeninowych. Ligacja.
5.Wprowadzenie do hodowli komórkowych. Zakładanie hodowli komórkowej.

1.Przygotowanie do izolacji ekstraktu jądrowego: omówienie zasad izolacji białek, przygotowanie buforów..
2.Izolacja ekstraktu białek jądrowych z wycinka tkanki nowotworowej.
3.Oznaczanie stężenia białka metodą spektrofotometryczną (aparat ND-1000).
4.Przygotowanie do elektroforezy białek SDS-PAGE: omówienie zasady rozdziału białek w polu elektrycznym, przygotowanie buforów, wylanie płytek.

1.Wprowadzenie do technik mikrobiologicznych. Zasady klonowania molekularnego.
2.Transformacja bakterii plazmidem. Hodowla bakterii w stałym.
3.Analiza restrykcyjna klonowanych konstruktów

1.Elektroforeza białek jądrowych w żelu poliakrylamidowym w obecności SDS.
2.Transfer białek jądrowych z żelu na błonę nitrocelulozową.
1.PCR kolonijny. Elektroforeza produktów PCR.
2.Elektroforeza produktów analizy restrykcyjnej.
3.Minihodowle bakteryjne w podłożu płynnym.