Zakład Immunologii Translacyjnej i Eksperymentalnej Intensywnej Terapii

Jednostka powstała z przekształcenia  Zakładu Cytologii Klinicznej oraz Pracowni Cytometrii Przepływowej.

Pracownicy:
dr hab. n. med. Tomasz Skirecki, prof. CMKP –  kierownik Zakładu

St. wykładowca:
dr n. przyr. Grażyna Hoser

Asystent dydaktyczny:
mgr Magdalena Bandyszewska
dr n. biol.  Marta Grabiec – Specjalista
mgr inż. Magdalena Ambrożek-Latecka – Specjalista naukowo-techniczny
Katarzyna Brulińska – technik
mgr Karolina Sidor – st. technik
mgr Agnieszka Kaczorowska – Gł. specjalista
mgr Aldona Jeznach – Asystent badawczo-dydaktyczny

Monika Ołdak – woźna

Zakład Immunologii Translacyjnej i Eksperymentalnej Intensywnej Terapii specjalizuje się w badaniach techniką cytometrii przepływowej oraz w pracy eksperymentalnej na modelu myszy z niedoborem immunologicznym. Jest pierwszym w kraju ośrodkiem, który opracował i wykorzystał w badaniach model myszy humanizowanych. Jest jednym z dwóch ośrodków w kraju, który zajmuje się sepsą w modelach przedklinicznych

ul. Marymoncka 99/103,
01-813 Warszawa

tel: 22 5693 830, 22 5693 831
fax: 22 5693 839
e-mail: bnzit@cmkp.edu.pl


Działalność dydaktyczna

W Zakładzie Immunologii Translacyjnej i Eksperymentalnej Intensywnej Terapii prowadzone są kursy z dziedziny immunologii, diagnostyki białaczek i techniki cytometrii przepływowej.

Działalność naukowa

  1. Głównym nurtem badawczym zakładu są badania nad immunopatogenezą sepsy. Badania te prowadzone są w modelach in vitro, in vivo oraz na próbkach od chorych. Aktualnie zajmujemy się także immunopatogenezą COVID-19.
  2. Drugi nurt badań dotyczy eksperymentalnych terapii prowadzących do eradykacji nie dzielących się nowotworowych komórek progenitorowych. Badania prowadzone są w modelu myszy z niedoborem immunologicznym.

profil dr. n. med. Tomasza Skireckiego na researchgate.net

Prowadzimy także badania we współpracy z licznymi jednostkami krajowymi i zagranicznymi:

  • Zakład Immunologii, WUM od 2018r, immunopatogeneza ciężkich zakażeń
  • Zakład Immunologii, UW od 2014r., odnowa limfocytów T w sepsie
  • Zakład Mikrobiologii Medycznej UW od 2017r. Patogeneza ciężkich zakażeń patogenami szpitalnymi
  • Zakład Cytologii UW od 2014 r., rola perycytów w patogenezie ostrego uszkodzenia płuc
  • Klinika Anestezjologii i Intensywnej Terapii Uniwersytetu Medycznego im. Piastów Śląskich we Wrocławiu od 2016r, immunopatogeneza sepsy
  • Pracownia Cytometrii Instytutu Biologii Doświadczalnej im. M. Nenckiego PAN, od 2016r. Przełamywanie oporności komórek białaczkowych na inhibitory kinaz tyrozynowych
  • Instytut Hematologii i Transfuzjologii, od 2016r. Przełamywanie oporności komórek białaczkowych na inhibitory kinaz tyrozynowych
  • Pracownia Genetyki Medycznej Katedry Genetyki Molekularnej UŁ, od 2016r. Przełamywanie oporności komórek białaczkowych na inhibitory kinaz tyrozynowych
  • Fels Institute for Cancer Research and Molecular Biology, Temple University w Filadelfii
  • Center for Sepsis Control Jena Medical University
  • Ludwig Boltzmann Insitute for Experimental and Clinical Traumatology w Wiedniu

Pracownia zajmuje się badaniami podstawowymi, nie prowadzi działań diagnostycznych.

Co wyróżnia jednostkę?

Pracownia jest wyspecjalizowana w badaniach techniką cytometrii przepływowej oraz w pracy eksperymentalnej na modelu myszy z niedoborem immunologicznym. Jest pierwszym w kraju ośrodkiem, który opracował i wykorzystał w badaniach model myszy humanizowanych. Prowadzimy badania w zaawansowanych modelach przedklinicznych sepsy i chorób nowotworowych.

  • Grant finansowany przez Narodowe Centrum Nauki
    Tytuł: „Treating sepsis and its chronic consequences with human adipose derived stem cells in aged and humanized mice”
    Program: CEUS-UNISONO
    Kierownik projektu: dr hab. n. med. Tomasz Skirecki, prof. CMKPThe primary aim of this project is to investigate the short- and long-term effects of the adipose- derived mesenchymal stromal cells treatment of sepsis in clinically-relevant murine models. Sepsis has been recognized by the World Health Organization as the global health priority and it has been estimated that as much as 11 million people die of sepsis annually. Mortality rates in septic shock reach 50% but as many as 60% of survivors do not fully recover. Especially the older population is at risk of the long-term consequences of sepsis which include muscle weakness, cognitive dysfunctions and emotional and anxiety disorders. Altogether, it often leads to the deterioration of the quality-of-life and even the necessity to live in the nursing facilities. Moreover, immune disturbances appear which increase risks of re-infections and death due to them. So far, no specific sepsis treatment exists apart from antimicrobials, fluids and supportive therapies. Studies investigating the influence of administered treatment on the long-term health effects of the sepsis survivors are missing. One of the promising therapeutic option for sepsis is the use of mesenchymal stromal cells (MSCs). MSCs are present in virtually all tissues and can easily be isolated and cultured. Of interest, these cells exert multiple immunomodulatory effects, they act anti-inflammatory but at the same time they boost bacteria clearance. Early studies in animal models of sepsis showed protective effects of MSCs application. On this base pahse I clinical trials have been performed which confirmed safety of MSCs but little biological effects have been observed. In order to facilitate the successful clinical use of MSCs we developed this study which aims to investigate whether MSCs therapy can improve the clinical course and long-term survival in peritonitis sepsis in old mice and humanized mice (with transplanted human immune cells). We also plan to evaluate the effects of MSCs treatment on the quality-of-life of surviving animals (muscle strength, physical activity, cognitive functions, anxiety disorders). To accomplish these goals, we will use advanced biotelemetry monitoring systems, clinical assessment scales and physiological and behavioral tests. In the second part of the study we plan to investigate the changes induced by the MSCs treatment at the molecular level (transcriptomic, protein and metabolomic). Also, a retrospective correlation analysis of these changes with the clinical effects will be performed. By the retrospective analysis we will also try to identify factors that may indicate treatment- responder’s subgroup.This project includes numerous clinically-relevant translational aspects. The experiments will be performed with the use of two complimentary animal models. Old mice respond to sepsis with higher severity and their regenerative capacities are limited which models the clinical situation (most septic patients are >65y.o.). Humanized mice are unique model enabling studies of the human cells in their tissue niches in controlled manner. Therefore, species-specific effects can be studied. The study protocol will include important aspects such as randomization, delyed treatment, supportive therapies, monitoring. While designing this study we aimed to accomplish the 3Rs rule which include reduction number of animals, refinement of their treatment and replacement by in vitro experiments where possible.

    We expect that the proposed study will be helpful in designing clinical therapy reducing the mortality and improving the quality-of-life of sepsis survivors. Obtained results will provide new knowledge on the pathophysiology of the long-term consequences of sepsis and will help to improve the design of clinical trials with cellular therapeutics.

PUBLIKACJE I GRANTY